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Campus Virtual

Bacteriología Clínica y Práctica en veterinaria

Modalidad Online • Presencial • Bimodal

Bacteriología Clínica y Práctica en veterinariaDiagnóstico certero en contextos desafiantes

Información Capacitación Online
  • Curso de Posgrado
  • Inicia: junio 2026
  • Duración: 12 semanas
Información Capacitación Presencial
  • Taller de Posgrado
  • Inicia: septiembre 2026
  • Duración: 2 días consecutivos
Pie_Universidad Nacional de Río Negro
Universidad Nacional de Río Cuarto
Pie_Universidad Nacional de La Rioja - Sede Chamical
Colegio Médico de Córdba
Equipo docente de Bacteriología Clínica y Práctica en veterinaria
Carlos Perotti
  • Esp.
  • |MV.
Carlos Perotti
Javier Mas
  • Esp.
  • |MV.
Javier Mas
José María Bosch
  • Lic.
José María Bosch
Cynthia Babino
  • Esp.
  • |Lic.
Cynthia Babino

Objetivos Online

  • La Ciencia detrás de la Cura

    Cuando los antibióticos fallan, la Bacteriología es la única respuesta.

    En la clínica diaria, enfrentamos infecciones rebeldes donde el tratamiento empírico ya no es suficiente. Este posgrado nace de la necesidad de cerrar la brecha entre el médico clínico y el laboratorio, transformando la “sospecha de infección” en un diagnóstico microbiológico de certeza.

    Esta formación está diseñada tanto para el clínico que necesita entender qué pedir y cómo interpretar los resultados, como para el profesional de laboratorio que busca perfeccionar sus técnicas de aislamiento e identificación.

    ¿Qué vas a lograr con esta formación especializada?

    • Excelencia en la Fase Pre-analítica: Entenderás que el diagnóstico empieza en el consultorio. Aprenderás las técnicas correctas de toma, conservación y transporte de muestras críticas (orina, hemocultivos, líquidos articulares, mielocultivos), garantizando que lo que llegue al laboratorio sea representativo de la patología.
    • Desmitificando el Laboratorio: Te adentrarás en la cocina de la bacteriología: preparación de medios, siembra y las condiciones metabólicas necesarias para que los patógenos crezcan.
    • Identificación del Enemigo: Aprenderás a clasificar y reconocer a los agentes causales, desde los Cocos Gram positivos más comunes hasta los Bacilos Gram negativos, anaerobios y gérmenes fastidiosos que suelen pasar desapercibidos.
    • El Poder del Antibiograma: Dejarás de “adivinar” el antibiótico. Dominarás la realización e interpretación de las pruebas de sensibilidad, entendiendo los mecanismos de resistencia bacteriana para elegir la terapia que realmente curará al paciente.
    • Gestión de Calidad y Bioseguridad: Implementarás protocolos para el manejo seguro de material biológico, descarte de residuos y control de calidad, protegiendo tanto al personal como al medio ambiente.

    Un Plus Exclusivo: Taller Práctico de Laboratorio (Optativo) La microbiología no se aprende solo leyendo, se aprende mirando por el microscopio y oliendo las placas. Complementamos la cursada teórica con un Taller Intensivo Presencial. En esta instancia, te pondrás el guardapolvo para realizar tinciones (Gram/Ziehl-Neelsen), sembrar en distintos agares, evaluar el crecimiento de colonias y medir halos de inhibición en antibiogramas reales. Es la oportunidad de entrenar el ojo y la mano bajo la guía de expertos.

Temario Online

  • Configuración y Bioseguridad (El Laboratorio Seguro)

    • Organización: Estructura funcional del laboratorio veterinario. Equipamiento esencial.
    • Bioseguridad: Normas para el manejo de agentes infecciosos. Protección personal y ambiental.
    • Microscopía Aplicada: Uso y cuidado del microscopio. Técnicas de enfoque.
    • Preparaciones Básicas: Frotis en fresco y extensiones. Coloraciones bacterianas fundamentales (Gram y otras).

    La Muestra Perfecta (Fase Pre-analítica)

    • Toma de Muestras Críticas: Protocolos para Piel, Oídos y Heridas.
    • Fluidos Corporales: Obtención aséptica de Orina (cistocentesis) y otros Líquidos Biológicos.
    • Muestras Sistémicas: Protocolos para Hemocultivos y Mielocultivos (médula ósea).
    • Enteropatógenos: Manejo del Coprocultivo.
    • Logística: Conservación y transporte para asegurar la viabilidad bacteriana hasta el procesamiento.

    El Arte del Cultivo (Fase Analítica)

    • Medios de Cultivo: Clasificación, preparación y esterilización de materiales.
    • Metabolismo Bacteriano: Requerimientos de oxígeno, carbohidratos y proteínas. Pruebas bioquímicas útiles para la identificación.
    • Técnicas de Siembra: Aislamiento primario y obtención de cultivos puros.

    Bacteriología Sistemática (Los Protagonistas)

    • Bacterias Comunes: Identificación de Cocos Gram Positivos y Bacilos Gram Negativos frecuentes.
    • Bacterias Complejas: Manejo de gérmenes fastidiosos y Anaerobios.
    • Introducción a la Micología: Diferenciación básica con hongos de importancia clínica.

    Terapéutica y Resistencia

    • El Antibiograma: Principios de las pruebas de difusión en disco.
    • Interpretación: Lectura de halos y correlación clínica. ¿Sensible, Intermedio o Resistente?
    • Guerra Biológica: Generalidades y mecanismos específicos de resistencia bacteriana. Cómo detectarlos.

    Gestión y Aplicación Clínica

    • Control de Calidad: Métodos para asegurar la fiabilidad de los resultados en el laboratorio.
    • Gestión de Residuos: Descarte seguro y desinfección de áreas.
    • Ateneo de Casos: Análisis y resolución de casos clínicos reales. Integración de la clínica, el cultivo y el antibiograma para el éxito terapéutico.

Temario Presencial

  • Estación 1: Entrenamiento Visual (Microscopía y Tinción)
    Calibración y Enfoque: Ajuste fino del microscopio para bacteriología (uso correcto del objetivo de inmersión y aceite).

    • El Arte del Frotis: Preparación de extendidos en fresco y fijación correcta de muestras (evitando errores comunes que arruinan la lámina).
    • Coloraciones en Vivo: Realización práctica de tinciones bacterianas básicas (Gram). Diferenciación visual de Cocos y Bacilos, Gram positivos y negativos al microscopio.

    Estación 2: La Cocina del Laboratorio (Preparación de Medios)

    • Medios de Cultivo: Clasificación práctica y criterios de selección. ¿Qué agar uso para qué sospecha?
    • Elaboración de Placas: Taller de preparación de medios de cultivo y material estéril. Pesado, hidratación, esterilización y servido en placas de Petri. Control de contaminación.

    Estación 3: Técnicas de Aislamiento y Siembra
    Manejo del Asa: Técnicas de siembra para aislamiento primario. Práctica de “agotamiento por estrías” para obtener colonias puras.

    • Inoculación: Siembra en medios líquidos y sólidos. Cómo maximizar la recuperación bacteriana de una muestra clínica.
    • Lectura de Cultivos: Identificación macroscópica de colonias (morfología, color, hemólisis) como primer paso diagnóstico.

    Estación 4: El Antibiograma y la Toma de Decisiones
    Montaje del Antibiograma: Técnica de difusión en disco (Kirby-Bauer). Estandarización del inóculo (Escala de McFarland) y colocación de discos de antibióticos.

    • Lectura e Interpretación: Medición manual de halos de inhibición. Uso de tablas de corte (CLSI) para determinar Sensibilidad (S), Resistencia (R) o Intermedio (I).

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CURSO INICIADO

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